ОХНМЖурнал аналитической химии Journal of Analytical Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-4502
  • ISSN (Online) 3034-512X

Автоматизированная жидкостная микроэкстракция фторхинолонов для их последующего хроматографического определения

Код статьи
10.31857/S0044450223020135-1
DOI
10.31857/S0044450223020135
Тип публикации
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 78 / Номер выпуска 2
Страницы
159-165
Аннотация
Разработан автоматизированный способ дисперсионной жидкостной микроэкстракции антибиотиков фторхинолонового ряда на принципах циклического инжекционного анализа. Способ предполагает диспергирование экстрагента газовой фазой, которая образуется in situ в экстракционной камере проточного анализатора. В качестве экстрагента для выделения и концентрирования фторхинолонов изучен глубокий эвтектический растворитель на основе терпеноида и смеси гидрофильной и гидрофобной карбоновых кислот, и обоснована возможность его применения. Гидрофильная карбоновая кислота в составе экстрагента выступает донором протонов для образования углекислого газа-диспергатора в присутствии растворенного в водной фазе карбоната натрия. На примере определения фторхинолонов в сточных водах показана возможность сочетания разработанного способа с методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуориметрическим детектированием. Пределы обнаружения (3σ) для офлоксацина, флероксацина и норфлоксацина составили 0.3 мкг/л.
Ключевые слова
дисперсионная жидкостная микроэкстракция автоматизация фторхинолоны глубокий эвтектический растворитель сточные воды жидкостная хроматография.
Дата публикации
14.09.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
12

Библиография

  1. 1. Крылов В.А., Крылов А.В., Мосягин П.В., Маткивская Ю.О. Жидкофазное микроэкстракционное концентрирование примесей // Журн. аналит. химии. 2011. Т. 66. С. 341.
  2. 2. Дмитриенко С.Г., Апяри В.В., Толмачева В.В., Горбунова М.В. Жидкостная экстракция органических соединений в каплю экстрагента. Обзор обзоров // Журн. аналит. химии. 2021. Т. 76. № 8. С. 675. https://doi.org/10.31857/S0044450221080041
  3. 3. Дмитриенко С.Г., Апяри В.В., Толмачева В.В., Горбунова М.В. Дисперсионная жидкостно-жидкостная микроэкстракция органических соединений. Обзор обзоров // Журн. аналит. химии. 2020. Т. 75. № 10. С. 867. https://doi.org/10.31857/S0044450220100059
  4. 4. Золотов Ю.А. Проточный химический анализ: монография. М.: Наука, 2014. 428 с.
  5. 5. Цизин Г.И., Статкус М.А., Золотов Ю.А. Сорбционное и экстракционное концентрирование микрокомпонентов в проточных системах анализа // Журн. аналит. химии. 2015. Т. 70. № 11. С. 1123.
  6. 6. Vakh C., Falkova M., Timofeeva I., Moskvin A., Moskvin L., Bulatov A. Flow analysis: A novel approach for classification // Crit. Rev. Anal. Chem. 2016. V. 46 P. 374. https://doi.org/10.1080/10408347.2015.1087301
  7. 7. Вах К.С., Тимофеева И.И., Булатов А.В. Автоматизация микроэкстракционного концентрирования на принципах циклического инжекционного анализа // Журн. аналит. химии. 2019. Т. 74. № 11. С. 846. https://doi.org/10.1134/S106193481911011X
  8. 8. Smith E.L., Abbott A.P., Ryder K.S. Deep eutectic solvents (DESs) and their applications // Chem. Rev. 2014. V. 114. № 21. P. 11060. https://doi.org/10.1021/cr300162p
  9. 9. Shishov A., Bulatov A., Locatelli M., Carradori S., Andruch V. Application of deep eutectic solvents in analytical chemistry. A review // Microchem. J. 2017. V. 135. P. 33. https://doi.org/10.1016/j.microc.2017.07.015
  10. 10. Cao J., Su E. Hydrophobic deep eutectic solvents: The new generation of green solvents for diversified and colorful applications in green chemistry // J. Clean. Prod. 2021. V. 314. Article 127965. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2021.127965
  11. 11. Ma Y., Wang Q., Zhu T. Comparison of hydrophilic and hydrophobic deep eutectic solvents for pretreatment determination of sulfonamides from aqueous environments // Anal. Methods. 2019. V. 11. P. 5901. https://doi.org/10.1039/C9AY02244A
  12. 12. Turnidge J. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of fluoroquinolones // Drugs. 1999. V. 58. P. 29. https://doi.org/10.2165/00003495-199958002-00006
  13. 13. Martins M.A.R., Crespo E.A., Pontes P.V.A., Silva L.P., Bülow M., Maximo G.J., Batista E.A.C., Held C., Pinho S.P., Coutinho J.A.P. Tunable hydrophobic eutectic solvents based on terpenes and monocarboxylic acid // ACS Sustain. Chem. Eng. 2018. V. 6. P. 8836. https://doi.org/10.1021/acssuschemeng.8b01203
  14. 14. Taverniers I., De Loose M., Van Bockstaele E. Trends in quality in the analytical laboratory. II. Analytical method validation and quality assurance // Trends Anal. Chem. 2004. V. 23. P. 535. https://doi.org/10.1016/j.trac.2004.04.001
  15. 15. Herrera-Herrera A.V., Hernández-Borges J., Borges-Miquel T.M., Rodríguez-Delgado M.Á. Dispersive liquid-liquid microextraction combined with ultra-high performance liquid chromatography for the simultaneous determination of 25 sulfonamide and quinolone antibiotics in water samples // J. Pharm. Biomed. Anal. 2013. V. 75. P. 130. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2012.11.026
  16. 16. Selahle S.K., Nomngongo P.N. Determination of fluoroquinolones in the environmental samples using vortex assisted dispersive liquid-liquid microextraction coupled with high performance liquid chromatography // Int. J. Environ. Anal. Chem. 2020. V. 100. P. 282. https://doi.org/10.1080/03067319.2019.1636042
  17. 17. Herrera-Herrera A.V., Hernández-Borges J., Borges-Miquel T.M., Rodríguez-Delgado M.Á. Dispersive liquid–liquid microextraction combined with nonaqueous capillary electrophoresis for the determination of fluoroquinolone antibiotics in waters // Electrophoresis. 2010. V. 31. P. 3457. https://doi.org/10.1002/elps.201000285
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека