- Код статьи
- 10.31857/S0044450223030088-1
- DOI
- 10.31857/S0044450223030088
- Тип публикации
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 78 / Номер выпуска 3
- Страницы
- 241-252
- Аннотация
- Предложены условия формирования физически адсорбированных трехслойных покрытий стенок кварцевого капилляра в капиллярном электрофорезе (КЭ) с последовательно нанесенными противоположно заряженными слоями модификаторов: поли(диаллилдиметиламмоний хлорида) (ПДАДМАХ) и стабилизированных цитратом наночастиц золота (НЧЗ). Показано, что трехслойные покрытия ПДАДМАХ-НЧЗ-ПДАДМАХ выгодно отличаются от монослойных с ПДАДМАХ большей стабильностью в широком диапазоне рН (2–10). Сформированные покрытия охарактеризованы сканирующей электронной микроскопией, подтверждено наличие равномерного плотного слоя наночастиц на поверхности капилляра. Возможность применения модифицированных капилляров в условиях КЭ продемонстрирована при разделении смеси 16 карбоновых кислот. Достигнутое увеличение селективности разделения с использованием трехслойных покрытий на основе НЧЗ объясняется обратимым обменом цитрат-анионов на поверхности НЧЗ с отрицательно заряженными аналитами в процессе электрофоретического анализа.
- Ключевые слова
- <i>:</i> наночастицы золота полислойные покрытия капиллярный электрофорез карбоновые кислоты.
- Дата публикации
- 01.03.2023
- Год выхода
- 2023
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 50
Библиография
- 1. Карцова Л.А., Макеева Д.В., Бессонова Е.А. Современное состояние метода капиллярного электрофореза // Журн. аналит. химии. 2020. Т. 12. № 75. С. 1059.
- 2. Kartsova L.A., Makeeva D.V., Davankov V.A. Capillary electrophoresis as a powerful tool for the analyses of bacterial samples // Trends Anal. Chem. 2019. V. 120. Article 115656. https://doi.org/10.1016/j.trac.2019.115656
- 3. Ban E., Yoo Y.S., Song E.J. Analysis and application of nanoparticles in capillary electrophoresis // Talanta. 2015. V. 141. P. 15. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2015.03.020
- 4. Zhang Z., Yan B., Liu K., Liao Y., Liu H. CE-MS analysis of heroin and its basic impurities using a charged polymer-protected gold nanoparticle-coated capillary // Electrophoresis. 2009. V. 30. P. 379. https://doi.org/10.1002/elps.200800069
- 5. Hamer M., Yone A., Rezzano I. Gold nanoparticle-coated capillaries for protein and peptide analysis on open-tubular capillary electrochromatography // Electrophoresis. 2021. V. 33. P. 334. https://doi.org/10.1002/elps.201100297
- 6. Kang H., Buchman J.T., Rodriguez R.S., Ring H.L., He J., Bantz K.C., Haynes C.L. Stabilization of silver and gold nanoparticles: preservation and improvement of plasmonic functionalities // Chem. Rev. 2019. V. 119. № 1. P. 664. https://doi.org/10.1021/acs.chemrev.8b00341
- 7. Neiman B., Grushka E., Lev O. Use of gold nanoparticles to enhance capillary electrophoresis // Anal. Chem. 2001. V. 73. P. 5220. https://doi.org/10.1021/ac0104375
- 8. Yu C.J., Su C.L., Tseng W.L. Separation of acidic and basic proteins by nanoparticle-filled capillary electrophoresis // Anal. Chem. 2006. V. 78. P. 8004. https://doi.org/10.1021/ac061059c
- 9. Subramaniam V., Griffith L., Haes A.J. Varying nanoparticle pseudostationary phase plug length during capillary electrophoresis // Analyst. 2011. V. 136. P. 3469. https://doi.org/10.1039/C1AN15185A
- 10. Qu Q., Liu D., Mangelings D., Yang C., Hu X. Permanent gold nanoparticle coatings on polyelectrolyte multilayer modified capillaries for open-tubular capillary electrochromatography // J. Chromatogr. A. 2010. V. 1217. P. 6588. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2010.08.057
- 11. Robb C.S. Applications of physically adsorbed polymer coatings in capillary electrophoresis // J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 2007. V. 30. № 5. P. 729. https://doi.org/10.1080/10826070701191029
- 12. Morrison D.J., Preston T. Formation of short chain fatty acids by the gut microbiota and their impact on human metabolism // Gut Microbes. 2016. V. 7. P. 189. https://doi.org/10.1080/19490976.2015.1134082
- 13. Zhang Q., Niu Y., Lyu W., Yu M. Formic acid up-regulates vascular tension through nitric oxide-cGMP signaling pathway // Chem. Biol. Interact. 2019. V. 309. Article 108710. https://doi.org/10.1016/j.cbi.2019.06.023
- 14. Galland L. The gut microbiome and the brain // J. Med. Food. 2014. V. 17. P. 1261. https://doi.org/10.1089/jmf.2014.7000
- 15. Frens G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in monodisperse gold suspensions // Nat. Phys. Sci. 1973. V. 241. P. 20.
- 16. Polikarpova D., Makeeva D., Kartsova L., Dolgonosov A., Kolotilina N. Nano-sized anion-exchangers as a stationary phase in capillary electrochromatography for separation and on-line concentration of carboxylic acids // Talanta. 2018. V. 188. P. 744. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2018.05.094
