- Код статьи
- S0044450225080091-1
- DOI
- 10.31857/S0044450225080091
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 80 / Номер выпуска 8
- Страницы
- 865-876
- Аннотация
- Продукты окислительного повреждения нуклеиновых кислот рассматриваются как относительно стабильные биомаркеры при диагностике негативных последствий оксидативного стресса. Содержание биомаркеров окислительной деградации ДНК (8-гидрокси-2’-дезоксигуанозин, 8-ОНdG) и РНК (8-гидроксигуанозин, 8-ОНG) в биожидкостях повышается при воздействии на организм токсичных соединений, радиации и других негативных факторов, сопряженных с оксидативным стрессом. Ввиду неинвазивности отбора и более высоких концентраций целевых аналитов моча рассматривается в качестве приоритетной матрицы для биомониторинга последствий оксидативного стресса. Разработана методика совместного определения 8-ОНdG и 8-ОНG в моче методом ВЭЖХ-МС/МС. В качестве внутреннего стандарта подобрано близкое по структуре экзогенное соединение 8-(1-гидроксибутан-2-иламино)-1,3,7-триметил-1-пурин-2,6(3Н,7Н). Диапазон измерений для обоих аналитов установлен в интервале от 1 до 50 нг/мл. Для подготовки биопроб к анализу оптимизирована процедура твердофазной экстракции на гидрофильно-липофильном сорбенте (HLB) в режиме удерживания целевых веществ. При использовании техники ВЭЖХ-МС/МС высокого разрешения погрешность анализа не превышает 25 % во всем диапазоне измерений. Проанализировано 130 образцов мочи работников химического предприятия без диагностированных системных заболеваний в возрасте от 20 до 70 лет. Содержание 8-ОНdG в образцах мочи находилось в интервале от 1 до 20 нг/мл, а 8-ОНG – от 2 до 12 нг/мл. Установлена зависимость концентраций обоих биомаркеров в моче от возраста работника.
- Ключевые слова
- оксидативный стресс высокоэффективная жидкостная хроматография с тандемным масс-спектрометрическим детектированием высокого разрешения (ВЭЖХ-МС/МС-ВР) 8-гидрокси-2’-дезоксигуанозин (8-ОНdG) 8-гидрокси-гуанозин (8-ОНG) мочевые биомаркеры
- Дата публикации
- 14.09.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 15
Библиография
- 1. Syslová K., Böhmová A., Mikoška M., Kuzma M., Pelclová D., Kačer P. Multimarker screening of oxidative stress in aging // Oxid. Med. Cell Longev. 2014. Article 562860.
- 2. Giustarini D., Dalle-Donne I., Tsikas D., Rossi R. Oxidative stress and human diseases: Origin, link, measurement, mechanisms, and biomarkers // Crit. Rev. Clin. Lab. Sci. 2009. V. 46. P. 241.
- 3. Reverri E.J., Morrissey B.M., Cross C.E., Steinberg F.M. Inflammation, oxidative stress, and cardiovascular disease risk factors in adults with cystic fibrosis // Free Radic. Biol. Med. 2014. V. 76. P. 261.
- 4. Andrisic L., Dudzik D., Barbas C., Milkovic L., Grune T., Zarkovic N. Short overview on metabolomics approach to study pathophysiology of oxidative stress in cancer // Redox Biol. 2018. V. 14. P. 47.
- 5. Ho E., Galougahi K.K., Liu C.-C., Bhindi R., Figtree G.A. Biological makers of oxidative stress: Applications to cardiovascular research and practice // Redox Biol. 2013. V. 1. P. 483.
- 6. Rodrigo R., Libuy M., Feliú F., Hasson D. Oxidative stress-related biomarkers in essential hypertension and ischemia-reperfusion myocardial damage // Dis. Markers. 2013. V. 35. P. 773.
- 7. Zinellu E., Zinellu A., Fois A. G., Carru C., Pirina P. Circulating biomarkers of oxidative stress in chronic obstructive pulmonary disease: A systematic review // Respir. Res. 2016. V. 17. P. 150.
- 8. Shroff A., Mamalis A., Jagdeo J. Oxidative stress and skin fibrosis // Curr. Pathobiol. Rep. 2014. V. 2. P. 257.
- 9. Araki E., Nishikawa T. Oxidative stress: A cause and therapeutic target of diabetic complications // J. Diabetes Investig. 2010. V. 1. P. 90.
- 10. Niedzielska E., Smaga I., Gawlik M., Monieczewski A., Stankowiez P., Pera J., Filip M. Oxidative stress in neurodegenerative diseases // Mol. Neurobiol. 2016. V. 53. P. 4094.
- 11. Padurariu M., Ciobica A., Lefter R., Serban I.L., Stefanescu C., Chirita R. The oxidative stress hypothesis in Alzheimer’s disease // Psychiatr. Danub. 2013. V. 25. P. 401.
- 12. Kino K., Hirao-Suzuki M., Morikawa M., Sakaga A., Miyazawa, H. Generation, repair and replication of guanine oxidation products// Genes Environ. 2017. V. 39. P. 21.
- 13. Schaich M.A., Weaver T.M., Roginskaya V., Freudenthal B.D., Van Houten B. Single-molecule analysis of purified proteins and nuclear extracts: Insights from 8-oxoguanine glycosylase 1 // DNA Repair. 2024. V. 134. Article 103625.
- 14. Nie J.J., Pian Y.Y., Hu J.H., Fan G.Q., Zeng L.T., Ouyang Q.G. Increased systemic RNA oxidative damage and diagnostic value of RNA oxidative metabolites during Shigella flexneri-induced intestinal infection // World J. Gastroenterol. 2021. V. 27. № 37. P. 6248.
- 15. Guo C., Chen Q., Chen J., Yu J., Hu Y., Zhang S., Zheng S. 8-Hydroxyguanosine as a possible RNA oxidative modification marker in urine from colorectal cancer patients: Evaluation by ultra performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry // J. Chromatogr. B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 2020. V. 1136. Article 121931.
- 16. Broedbaek K., Ribel-Madsen R., Henriksen T., Weimann A., Petersen M., Andersen J.T. Genetic and environmental influences on oxidative damage assessed in elderly Danish twins // Free Radic. Biol. Med. 2011. V. 50. № 11. P.1488.
- 17. Hofer T., Seo A.Y., Prudencio M., Leeuwenburgh C. A method to determine RNA and DNA oxidation simultaneously by HPLC-ECD: Greater RNA than DNA oxidation in rat liver after doxorubicin administration // Biol. Chem. 2006. V. 387. № 1. P. 103.
- 18. Liu Q., Liu Z., Wang C.C., Gao X., Li C.B., Wang M., Wang Q., Cai J.P. Increased production of 8-oxo-7,8-dihydroguanine in human urine, a novel biomarker of osteoporosis // Free Radic. Res. // 2022. V. 56. № 5–6. P. 358.
- 19. Liu Z., Wang J.J., Liu Q., Li J., Jiang S., Ma Y.Q., Dang Y.M., Cai J.P. Urinary 8-oxoGuo as a potential novel evaluation index for patients with nephrotic syndrome // Free Radic. Res. 2022. V. 56. № 11–12. P. 691.
- 20. Shimoi K., Kasai H., Yokota N., Toyokuni S., Kinae N. Comparison between high-performance liquid chromatography and enzyme-linked immunosorbent assay for the determination of 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine in human urine // Cancer Epidemiol. Biomark. Prev. 2002. V. 11. P. 767.
- 21. Ravanat J., Guicherd P., Tuce Z., Cadet J. Simultaneous determination of five oxidative DNA lesions in human urine // Chem. Res. Toxicol. 1999. V. 12. P. 802.
- 22. Chiorcea-Paquim, A.-M. 8-oxoguanine and 8-oxodeoxyguanosine biomarkers of oxidative DNA damage: A review on HPLC–ECD determination // Molecules. V. 27. № 5. P. 1620.
- 23. Pilger A., Ivancsits S., Germadnik D., Rüdiger H.W. Urinary excretion of 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine measured by high performance liquid chromatography with electrochemical detection // J. Chromatogr. B. 2002. V. 778. P. 393.
- 24. Zhao G., Fu Y., Yu J., Wang S., Duan K., Xie F., Liu H. A Simple method for the determination of 8-oxoguanosine, 8-oxo-2′-deoxyguanosine and 8-iso-prostaglandin F2α in human urine by UHPLC–MS/MS // Chromatographia. 2017. V. 80. № 3. P. 401.
- 25. Каюков И.Г., Галкина О.В., Тимшина Е.И., Зубина И.М., Михеева А.Ю., Бердичевский Г.М. Креатинин в современной оценке функционального состояния почек (Обзор литературы и собственные данные) // Нефрология 2020. T. 24. № 4. C. 21.
- 26. Wu L.L., Chiou C.C., Chang P.Y., Wu J.T. Urinary 8-OHdG: A marker of oxidative stress to DNA and a risk factor for cancer, atherosclerosis and diabetics // Clin. Chim. Acta. 2004. V. 339. № 1-2. P. 1.
- 27. Martinez-Moral, M.-P., Kannan, K. Analysis of 19 urinary biomarkers of oxidative stress, nitrative stress, metabolic disorders, and inflammation using liquid chromatography–tandem mass spectrometry // Anal. Bioanal. Chem. 2022. V. 414. № 6. P. 2103.
- 28. Lu Z., Li Q., Dai Y., Pan X., Luo X., Peng R., Guo C., Tan L. Association of co-exposure to polycyclic aromatic hydrocarbons and phthalates with oxidative stress and inflammation // Sci. Total Environ. 2024. V. 912. Article 169513.
- 29. Lin X.Y., Liu Y.X., Zhang, Y.J., Shen, H.M., Guo, Y. Polycyclic aromatic hydrocarbon exposure and DNA oxidative damage of workers in workshops of a petrochemical group // Chemosphere. 2022. V. 303. Article 135076.
- 30. Shih Y.M., Cooke M.S., Pan C.H., Chao M.R., Hu C.W. Clinical relevance of guanine-derived urinary biomarkers of oxidative stress, determined by LC-MS/MS // Redox Biol. 2019. V. 20. P. 556. DOI: 10.1016/j.redox.2018.11.016
- 31. Malayappan B., Garrett T.J., Segal M., Leeuwenburgh C. Urinary analysis of 8-oxoguanine, 8-oxoguanosine, fapy-guanine and 8-oxo-2’-deoxyguanosine by high-performance liquid chromatography-electrospray tandem mass spectrometry as a measure of oxidative stress // J. Chromatogr. A. 2007. V. 1167. № 1. P. 54.
- 32. Li Y.S., Fujisawa K., Kawai K. Diurnal and daily fluctuations in levels of the urinary oxidative stress marker 8-hydroxyguanosine in spot urine samples // Genes Environ. 2025. V. 47. № 1.
- 33. Cordes J., Zhao S., Engel C. M., Stingele J. Cellular responses to RNA damage // Cell. 2025. V. 188. № 4. P. 885.
