Везде

ОХНМЖурнал аналитической химии Journal of Analytical Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-4502
  • ISSN (Online) 3034-512X

РАЗРАБОТКА И ВАЛИДАЦИЯ ИММУНОХРОМАТОГРАФИЧЕСКОЙ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ОКАДАЕВОЙ КИСЛОТЫ В МОРЕПРОДУКТАХ

Вы можете
Код статьи
S3034512XS0044450225050055-1
DOI
10.7868/S3034512X25050055
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Врублевская В. В.
  • Аффилиация: Федеральное государственное унитарное предприятие “Научный центр “Сигнал”
Том/ Выпуск
Том 80 / Номер выпуска 5
Страницы
489-500
Аннотация
Окадаевая кислота (ОК) и ее производные, динофизистоксины, относятся к группе диарейных токсинов (DSP-токсины), которые продуцируются токсинообразующими динофлагеллятами. При поглощении водорослей моллюсками DSP-токсины концентрируются в жировой ткани животных и могут привести к острому отравлению человека при их потреблении. Нами разработана простая, чувствительная и специфичная тест-система для обнаружения и полуколичественного экспресс-определения ОК и ее производных в моллюсках, основанная на прямом конкурентном иммунохроматографическом анализе. На тест-полосках имеются три линии связывания иммунореагентов - тестовая, контрольная и внутренняя линия сравнения, интенсивность окрашивания которой не зависит от концентрации ОК в растворе и сопоставима с интенсивностью окрашивания тестовой линии. При наличии DSP-токсинов в пробе интенсивность окрашивания тестовой линии снижается относительно линии сравнения, что позволяет выявлять присутствие токсинов в пробах. Пробоподготовка включает в себя экстракцию гомогенатов тканей моллюсков метанолом с последующим разведением экстракта раствором для анализа. Тест-полоски изготовлены в формате dip-stick, и процедура анализа заключается в погружении части тест-полоски в пробу на несколько секунд с обработкой результатов через 30мин. Суммарная продолжительность анализа с учетом пробоподготовки образцов составляет около 1ч. Тест-система позволяет достоверно обнаруживать и полуколичественно определять ОК в различных моллюсках (устрицы, мидии, вонголе, трубач, морские гребешки) при содержании токсина не более 40 нг/г (визуальный способ регистрации результатов) и не более 10 нг/г (инструментальный способ регистрации результатов), что значительно ниже предельно допустимой концентрации для ОК, установленной Всемирной организацией здравоохранения и Роспотребнадзором (160 нг/г). Кроме ОК, тест-система способна выявлять в моллюсках и ее производные - динофизистоксин-1 и динофизистоксин-2. Разработанная иммунохроматографическая тест-система может быть использована для мониторинга содержания токсинов ОК-группы в моллюсках в России.
Ключевые слова
динофлагелляты моллюски окадаевая кислота динофизистоксины иммунохроматографическая тест-система
Дата публикации
15.05.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
52

Библиография

  1. 1. Wright J.L.C. Dealing with seafood toxins: Present approaches and future options // Food Res. Int. 1995. V. 28. № 4. Р. 347. https://doi.org/10.1016/0963-9969 (95)00001-3
  2. 2. Reguera B., Riobó P., Rodríguez F., Díaz P.A., Pizarro G., Paz B. et al. Dinophysis toxins: Causative organisms, distribution and fate in shellfish // Mar. Drugs. 2014. V. 12. P. 394. https://doi.org/10.3390/md12010394
  3. 3. Blanco J. Accumulation of dinophysis toxins in bivalve molluscs // Toxins. 2018. V. 10. № 11. P. 453. https://doi.org/10.3390/toxins10110453
  4. 4. Hu T., Curtis J.M., Walter J.A., McLachlan J.L., Wright J.L.C. Two new water-soluble DSP toxin derivatives from the dinofagellate Prorocentrum maculosum: Possible storage and excretion products // Tetrahedron Lett. 1995. V. 36. P. 9273. https://doi.org/10.1016/0040-4039 (95)02010-M
  5. 5. Domínguez H.J., Paz B., Daranas A.H., Norte M., Franco J.M., Fernández J.J. Dinoflagellate polyether within the yessotoxin, pectenotoxin and okadaic acid toxin groups. Characterization, analysis and human health implications // Toxicon. 2010. V. 56. P. 191. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2009.11.005
  6. 6. Hallegraeff G.M. Harmful algal blooms: A global overview / Manual on Harmful Marine Microalgae / Ed. Hallegraeff G.M. IOC Manuals and Guides. UNESCO, 1995. № 33. P. 1.
  7. 7. Takai A., Murata M., Torigoe K., Isobe M., Mieskes G., Yasumoto T. Inhibitory effect of okadaic acid derivatives on protein phosphatases. A study on structure-affinity relationship // Biochem. J. 1992. V. 284 (Pt 2). P. 539. https://doi.org/10.1042/bj2840539
  8. 8. European Commission Regulation (EC) No. 2074/2005 under regulations 450 (EC) nos. 451 853/2004 and 854/2004 // Off. J. Eur. Comm. 2005. V. 358. P. 27. http://data.europa.eu/eli/reg/2005/2074/oj
  9. 9. Codex Alimentarius Commission. Standard for live and raw bivalve molluscs. Codex standard 292-2008. 2008. P. 9.
  10. 10. European Food Safety Authority (EFSA). Marine biotoxins in shellfish - Summary on regulated marine biotoxins. Scientific opinion of the panel on contaminants in the food chain in feed and food // EFSA J. 2009. V. 1306. P. 1. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2009.1306
  11. 11. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы (СанПиН 2.3.2.2401-08) от 16.07.2008.
  12. 12. Rodriguez I., Vieytes M.R., Alfonso A. Analytical challenges for regulated marine toxins. Detection methods // Curr. Opin. Food Sci. 2017. V. 18. P. 29. https://doi.org/10.1016/j.cofs.2017.10.008
  13. 13. Laycock M.V., Jellett J.F., Easy D.H., Donovan M.A. First report of a new rapid assay for diarrhetic shellfish poisoning toxins // Harmful Algae. 2006. V. 5. P. 74. https://doi.org/10.1016/j.hal.2005.05.006
  14. 14. Lu S.-Y., Lin C., Li Y.-S., Zhou Y., Meng X.-M., Yu S.-Y. et al. A screening lateral flow immunochromatographic assay for on-site detection of okadaic acid in shellfish products // Anal. Biochem. 2012. V. 422. P. 59. https://doi.org/10.1016/j.ab.2011.12.039
  15. 15. Hu L., Liu J., Wang Q., Zhang Y., Jia R., Cai C. et al. Development of an immunochromatographic strip test for the rapid detection of okadaic acid in shellfish sample // J. Appl. Phycol. 2013. V. 25. P. 1091. https://doi.org/10.1007/s10811-012-9949-3
  16. 16. Jawaid W., Meneely J.P., Campbell K., Melville K., Holmes S.J., Rice J., Elliott C.T. Development and validation of a lateral flow immunoassay for the rapid screening of okadaic acid and all dinophysis toxins from shellfish extracts // J. Agric. Food. Chem. 2015. V. 63. № 38. P. 8574. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.5b01254
  17. 17. Wang R., Zeng L., Yang H., Zhong Y., Wang J., Ling S. et al. Detection of okadaic acid (OA) using ELISA and colloidal gold immunoassay based on monoclonal antibody // J. Hazard. Mater. 2017. V. 339. P. 154. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2017.06.030
  18. 18. Mills C., Dillon M.J., Kulabhusan P.K., Senovilla-Herrero D., Campbell K. Multiplex lateral flow assay and the sample preparation method for the simultaneous detection of three marine toxins // Environ. Sci. Technol. 2022. V. 56. № 17. P. 12210. https://doi.org/10.1021/acs.est.2c02339
  19. 19. Hendrickson O.D., Zvereva E.A., Panferov V.G., Solopova O.N., Zherdev A.V., Sveshnikov P.G., Dzantiev B.B. Application of Au@Pt nanozyme as enhancing label for the sensitive lateral flow immunoassay of okadaic acid // Biosensors. 2022. V. 12. Article 1137. https://doi.org/10.3390/bios12121137
  20. 20. Hendrickson O.D., Zvereva E.A., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Cascade-enhanced lateral flow immunoassay for sensitive detection of okadaic acid in seawater, fish, and seafood // Foods. 2022. V. 11. Article 1691. https://doi.org/10.3390/foods11121691
  21. 21. Hendrickson O.D., Zvereva E.A., Solopova O.N., Zherdev A.V., Sveshnikov P.G., Eremin S.A., Dzantiev B.B. Double immunochromatographic test system for sensitive detection of phycotoxins domoic acid and okadaic acid in seawater and seafood // Micromachines. 2022. V. 13. № 9. Article 1506. https://doi.org/10.3390/mi13091506
  22. 22. Zvereva E.A., Hendrickson O.D., Solopova O.N., Zherdev A.V., Sveshnikov P.G., Dzantiev B.B. Triple immunochromatographic test system for detection of priority aquatic toxins in water and fish // Anal. Bioanal. Chem. 2022. V. 414. P. 7553. https://doi.org/10.1007/s00216-022-04298-8
  23. 23. Frens G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in monodisperse gold solution // Nat. Phys. Sci. 1973. V. 241. P. 20.
  24. 24. Matsuura S., Kita H., Takagaki Y. Specificity of mouse monoclonal anti-okadaic acid antibodies to okadaic acid and its analogs among diarrhetic shellfish toxins // Biosci. Biotechnol. Biochem. 1994. V. 58. P. 1471. https://doi.org/10.1271/bbb.58.1471
  25. 25. Mountfort D.O., Suzuki T., Truman P. Protein phosphatase inhibition assay adapted for determination of total DSP in contaminated mussels // Toxicon. 2001. V. 39. P. 383. https://doi.org/10.1016/S0041-0101 (00)00144-6.
  26. 26. Louppis A.P., Badeka A.V., Katikou P., Paleologos E.K., Kontominas M.G. Determination of okadaic acid, dinophysistoxin-1 and related esters in Greek mussels using HPLC with fluorometric detection, LC-MS/MS and mouse bioassay // Toxicon. 2010. V. 55. P. 724. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2009.10.026
  27. 27. Vdovenko M.M., Hung C-T., Sakharov I.Y., Yu F-Y. Determination of okadaic acid in shellfish by using a novel chemiluminescent enzyme-linked immunosorbent assay method // Talanta. 2013. V. 116. P. 343. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2013.05.057
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека