- Код статьи
- 10.31857/S0044450224070032-1
- DOI
- 10.31857/S0044450224070032
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 79 / Номер выпуска 7
- Страницы
- 716-725
- Аннотация
- Разработан вольтамперометрический иммуносенсор типа сэндвич на основе конъюгатов наночастиц золота (НЧ Au) и специфических иммуноглобулинов (IgG) против овальбумина (IgG@НЧAu) для определения овальбумина в некоторых иммунобиологических препаратах. Конъюгат IgG@НЧAu синтезировали методом пассивной адсорбции. В качестве субстратной электродной подложки для иммобилизации рецепторного слоя специфических иммуноглобулинов использовали углеродсодержащий планарный печатный электрод, модифицированный восстановленным лазером оксидом графена. Для усиления сигнала НЧ Au рассмотрена возможность каталитического восстановления нитрата серебра смесью восстановителей – лимонной кислоты и метола. Подобраны условия вольтамперометрической регистрации электрохимического сигнала серебра на иммуносенсоре, который успешно апробирован при определении остатков овальбумина в некоторых иммунобиологических лекарственных препаратах. В качестве метода сравнения использовали твердофазный иммуноферментный анализ.
- Ключевые слова
- наночастицы золота конъюгаты на основе иммуноглобулинов и наночастиц золота электрохимический иммуносенсор овальбумин вакцины
- Дата публикации
- 14.09.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 6
Библиография
- 1. Yamamoto T., Juneja L. R., Hatta H., Kim M. Hen Eggs: Basic and Applied Science. CRC Press, 1996. 216 p.
- 2. Edevag G., Eriksson M., Granström M. The development and standardization of an ELISA for ovalbumin determination in influenza 101 vaccines // J. Biol. Stand. 1986. V. 14. № 3. P. 223. https://doi.org/10.1016/0092-1157 (86)90007-7
- 3. Давлетбаева Л.Р. Валидация количественных иммуноферментных тест-систем для контроля качества медицинских иммунобиологических препаратов. Дис. ... канд. биол. наук. Уфа: Министерство здравоохранения и социального развития Российской федерации, 2007. 111 с.
- 4. Полтавченко А.Г., Полтавченко Д.А., Загоскина Т.Ю. Перспективы использования коллоидного серебра как маркера иммуноанализа // Сибирь-Восток. 2002. Т. 3. № 51. С. 10.
- 5. Iglesias-Mayor A., Amor-Gutiérrez O., Costa-García A., de la Escosura-Muñiz A. Nanoparticles as emerging labels in electrochemical immunosensors // Sensors. 2019. V. 19. № 23. Article 5137. https://doi.org/10.3390/s19235137
- 6. Beck F., Horn C., Baeumner A. J. Ag nanoparticles outperform Au nanoparticles for the use as label in electrochemical point-of-care sensors // Anal. Bioanal. Chem. 2022. V. 414. P. 475. https://doi.org/10.1007/s00216-021-03288-6
- 7. Frens G. Controlled nucleation for the regulation of particle size in monodisperse gold suspensions // Nat. Phys. Sci. 1973. V. 241. № 105. P. 20. https://doi.org/10.1038/physci241020a0
- 8. Schwartzbach S. D., Osafune T. Immunoelectron Microscopy: Methods and Protocols. Totowa, NJ: Humana Press, 2010. 351 p.
- 9. Rodriguez R.D., Khalelov A., Postnikov P.S., Lipovka A., Dorozhko Е., Amin I., Murastov G.V., Chen J.-J., Sheng W., Trusova M.E., Chehimi M.M., Sheremet E. Beyond graphene oxide: Laser engineering functionalized graphene for flexible electronics // Materials Horizons. 2020. V. 7. № 4. P. 1030. https://doi.org/10.1039/C9MH01950B
- 10. Saqib M., Dorozhko E.V., Barek J., Vyskocil V., Korotkova E.I., Shabalina A.V. A laser reduced graphene oxide grid electrode for the voltammetric determination of carbaryl // Molecules. 2021. V. 26. № 16. Atricle 5050. https://doi.org/10.3390/molecules26165050
- 11. Rusling J. F. Nanomaterials-based electrochemical immunosensors for proteins // Chemical Record. 2012. V. 12. № 1. P. 164. https://doi.org/10.1002/tcr.201100034
- 12. Qin X., Dong Y., Wang M., Zhu Z., Li M., Chen X. et al. C-dots assisted synthesis of gold nanoparticles as labels to catalyze copper deposition for ultrasensitive electrochemical sensing of proteins // Sci. China Chem. 2018. V. 61. P. 476. https://doi.org/10.1007/s11426-017-9204-8
- 13. Chen Z.-P., Peng Z.-F., Luo Y., Qu B., Jiang J.-H., Zhang X.-B. et al. Successively amplified electrochemical immunoassay based on biocatalytic deposition of silver nanoparticles and silver enhancement // Biosens. Bioelectron. 2007. V. 23. № 4. P. 485. https://doi.org/10.1016/j.bios.2007.06.005
- 14. Zhao C., Wu J., Ju H., Yan F. Multiplexed electrochemical immunoassay using streptavidin/nanogold/carbon nanohorn as a signal tag to induce silver deposition // Anal. Chim. Acta. 2014. V. 847. P. 37. https://doi.org/10.1016/j.aca.2014.07.035
- 15. Полтавченко А.Г., Ерш А.В., Крупницкая Ю.А. Выбор системы детекции для мультиплексного дот-иммуноанализа антител // Клиническая лабораторная диагностика. 2016. Т. 61. № 4. С. 229.
- 16. ICH Q. R. The international council for harmonisation of technical requirements for pharmaceuticals for human use (ICH). Text and methodology Q. 2022. V. 2.
- 17. Экспериандова Л.П., Беликов К.Н., Химченко С.В., Бланк Т.А. Еще раз о пределах обнаружения и определения // Журн. аналит. химии. 2010. Т. 65. №. 3. С. 229. (Eksperiandova L.P., Belikov K.N., Khimchenko S.V., Blank T.A. Once again about determination and detection limits // J. Anal. Chem. 2010. V. 65. P. 223. https://doi.org/10.1134/S1061934810030020)
- 18. Dankwardt A., Hock B., Simon R., Freitag D., Kettrup A. Determination of non-extractable triazine residues by enzyme immunoassay: Investigation of model compounds and soil fulvic and humic acids // Environ. Sci. Technol. 1996. V. 30 № 12. P. 3493. https://doi.org/10.1021/es9601604
