- PII
- S0044450225060042-1
- DOI
- 10.31857/S0044450225060042
- Publication type
- Article
- Status
- Published
- Authors
- Volume/ Edition
- Volume 80 / Issue number 6
- Pages
- 574-581
- Abstract
- An ion-selective electrode for the rapid determination of ceftriaxone (Ceftr) in biological objects has been proposed, in which the ionic associate of octadecylamine (ODA) with Ceftr is an electrode-active component (EAC) of the Ceftriaxone-selective electrode (Ceftr-SE) membrane. In order to establish the mechanism of membrane function, the equilibria in the membrane-solution system were studied as a function of the acidity of the medium and the amount of EAC. At pH 6-9, the ionic associate (ODA) -Ceftr is stable and the membrane responds selectively to ceftriaxone. The optimal membrane composition for Ceftr-CE, (wt. %) was selected: (ODA) -Ceftr - 0.80, polyvinyl chloride - 33.06, ODA - 1.7 (100 mM), dioctyl sebacinate - 66.14, internal electrolyte Ceftr (0.01 M) + KCl (0.01 M). The electrochemical performance characteristics of the Ceftr-SE membrane were studied: linear range 1 × 10 -0.1 M, steepness of the electrode function 24.9 mV/decade, detection limit of Ceftr 8.3 × 10 M. The potentiometric selectivity coefficients of Ceftr-SE were determined by the method of bi-ionic potentials. The electrode was used for the determination of Ceftr in blood and saliva of covid patients. The correctness of the results of Ceftr determination was confirmed by the injected-found method.
- Keywords
- ионометрия мембрана электродноактивный компонент электрод определение цефтриаксона биологические объекты
- Date of publication
- 10.03.2025
- Year of publication
- 2025
- Number of purchasers
- 0
- Views
- 15
References
- 1. Stoian I.A., Iacob B.C., Dudas C.L., Barbu-Tudoran L., Bogdan D., Marian I. O., Bodoki E., Oprean R. Biomimetic electrochemical sensor for the highly selective detection of azithromycin in biological samples // Biosens. Bioelectron. 2020. V. 155. № 2. P. 1. https://doi.org/10.1016/j.bios.2020.112098
- 2. Ryan J.A. Colorimetric determination of gentamicin, kanamycin, tobramycin, and amikacin aminoglycosides with 2, 4-dinitrofluorobenzene // J. Pharm. Sci. 1984. V. 73. № 9. P. 1301. https://doi.org/10.1002/jps.2600730930
- 3. Zhang F., Gu S., Ding Y., Zhou L., Zhang Z., Li L. Electrooxidation and determination of cefotaxime on Au nanoparticles/poly (L-arginine) modified carbon paste electrode // J. Electroanal. Chem. 2013. V. 698. P. 25.
- 4. Кулапина Е.Г., Баринова О.В., Кулапина О.И., Утц И.А., Снесарева С.В. Современные методы определения антибиотиков в биологических и лекарственных средах (обзор) // Антибиотики и химиотерапия. 2009. Т. 54. № 9-10. С. 53.
- 5. Moats W.A. Determination of tetracycline antibiotics in beef and pork tissues using ion-paired liquid chromatography // J. Agric Food Chem. 2000. V. 48. № 6. P. 2244. https://doi.org/10.1021/jf990649r
- 6. Zhou J., Xue X., Li Yi, Zhang J., Chen F., L. Wu, Chen L., Zhao J. Multiresidue determination of tetracycline antibiotics in propolis by using HPLC-UV detection with ultrasonic-assisted extraction and twostep solid phase extraction // Food Chem. 2009. V. 115. № 3. P. 1074. https://doi.org/10.1016/J.FOODCHEM.2008.12.031
- 7. Ahmadi F., Shahbazi Y., Karami N. Determination of tetracyclines in meat using two phases freezing extraction method and HPLC-DAD // Food Anal. Methods. 2015. V. 8. № 7. P. 1883. https://doi.org/10.1007/s12161-014-0073-7
- 8. Shalaby A.R., Salama Nadia A., Abou-Raya S.H., Emam Wafaa H., Mehaya F.M. Validation of HPLC method for determination of tetracycline residues in chicken meat and liver // Food Chem. 2011. V. 124. № 4. P. 1660. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2010.07.048
- 9. Bompadre S., Ferrante L., Alо F.P., Leone L. On-line solid-phase extraction of ceftazidime in serum and determination by high-performance liquid chromatography // J. Chromatogr. B: Biomed. Sci. Appl. 1995. V. 669. P. 265. https://doi.org/10.1016/0378-4347 (95)00100-w
- 10. Киричук В.Ф., Барагузина В.В. Экспрессное определение β-лактамных антибиотиков в биологических средах с применением потенциометрических сенсоров // Антибиотики и химиотерапия. 2007. № 9-10. С. 14.
- 11. Татаева С.Д., Магомедова В.С., Магомедов К.Э. Определение ионов свинца с помощью электрода на основе диантипирилметана // Журн. аналит. химии. 2016. Т. 71. № 11. С. 1172.
- 12. Кулапина Е. Г., Чанина В. В. Модифицированные потенциометрические сенсоры различных типов для определения цефтриаксона // Изв. Сарат. ун-та. Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология. 2020. Т. 20. № 3. С. 259. https://doi.org/10.18500/1816-9775-2020-20-3-259-267
- 13. Кулапина Е.Г., Кулапина О.И., Утц И.А., Михайлова М.С. Мембрана ионселективного электрода для определения цефалоспориновых антибиотиков в лекарственных и биологических средах. Патент РФ № 2469304 С1. Заявка 2011120384/15 от 20.05.2011, опубл. 10.12.2012. Б. И. № 34.
- 14. Шведене Н.В., Боровская С.В. Ионометрическое определение β-лактамных антибиотиков // Журн. аналит. химии. 2003. Т. 58. № 11. С. 1208.
- 15. Magomedov K.E., Zeynalov R.Z., Suleymanov S.I., Tataeva S.D., Magomedova V.S. Calculation of lipophilicity of organophosphate pesticides using density functional theory // Membranes. 2022. Т. 12. № 6. P. 632. https://doi.org/10.3390/mem-branes12060632
- 16. Алексеев В.Г. Кислотно-основные свойства пеницилинов и цефалоспоринов // Хим.-фарм. журн. 2010. Т. 44. №. 1. С. 16.
- 17. Татаева С.Д., Магомедов К.Э., Зейналов Р.З. Мембрана ионселективного электрода для определения цефтриаксона в биосистемах. Патент РФ № 2789107. Заявка 2022103812 от 14.02.2022, опубл. 30.01.2023.
