- Код статьи
- S0044450225060042-1
- DOI
- 10.31857/S0044450225060042
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 80 / Номер выпуска 6
- Страницы
- 574-581
- Аннотация
- Предложен ионселективный электрод для экспресс-определения цефтриаксона (Ceftr) в биологических объектах, в котором ионный ассоциат октадециламина (ОДА) с Ceftr является электродноактивным компонентом (ЭАК) мембраны цефтриаксонселективного электрода (Ceftr-СЭ). С целью установления механизма функционирования мембраны изучены равновесия в системе мембрана-раствор в зависимости от кислотности среды и количества ЭАК. При pH 6-9 ионный ассоциат (ОДА)·Ceftr стабилен, а мембрана селективно откликается на цефтриаксон. Подобран оптимальный состав мембраны для Ceftr-СЭ, (мас.%): (ОДА)·Ceftr - 0.80, поливинилхлорид - 33.06, ОДА - 1.7 (100 мМ), диоктилсебацинат - 66.14, внутренний электролит Ceftr (0.01 М) + KCl (0.01 M). Изучены электрохимические характеристики работы мембраны Ceftr-СЭ: линейный диапазон 1 × 10-0.1 М, крутизна электродной функции 24.9 мВ/декада, предел обнаружения Ceftr 8.3 × 10 М. Способом биионных потенциалов определены потенциометрические коэффициенты селективности Ceftr-СЭ. Электрод использован для определения Ceftr в крови и слюне больных ковидом. Правильность результатов определения Ceftr подтверждена методом введено-найдено.
- Ключевые слова
- ионометрия мембрана электродноактивный компонент электрод определение цефтриаксона биологические объекты
- Дата публикации
- 10.03.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 14
Библиография
- 1. Stoian I.A., Iacob B.C., Dudas C.L., Barbu-Tudoran L., Bogdan D., Marian I. O., Bodoki E., Oprean R. Biomimetic electrochemical sensor for the highly selective detection of azithromycin in biological samples // Biosens. Bioelectron. 2020. V. 155. № 2. P. 1. https://doi.org/10.1016/j.bios.2020.112098
- 2. Ryan J.A. Colorimetric determination of gentamicin, kanamycin, tobramycin, and amikacin aminoglycosides with 2, 4-dinitrofluorobenzene // J. Pharm. Sci. 1984. V. 73. № 9. P. 1301. https://doi.org/10.1002/jps.2600730930
- 3. Zhang F., Gu S., Ding Y., Zhou L., Zhang Z., Li L. Electrooxidation and determination of cefotaxime on Au nanoparticles/poly (L-arginine) modified carbon paste electrode // J. Electroanal. Chem. 2013. V. 698. P. 25.
- 4. Кулапина Е.Г., Баринова О.В., Кулапина О.И., Утц И.А., Снесарева С.В. Современные методы определения антибиотиков в биологических и лекарственных средах (обзор) // Антибиотики и химиотерапия. 2009. Т. 54. № 9-10. С. 53.
- 5. Moats W.A. Determination of tetracycline antibiotics in beef and pork tissues using ion-paired liquid chromatography // J. Agric Food Chem. 2000. V. 48. № 6. P. 2244. https://doi.org/10.1021/jf990649r
- 6. Zhou J., Xue X., Li Yi, Zhang J., Chen F., L. Wu, Chen L., Zhao J. Multiresidue determination of tetracycline antibiotics in propolis by using HPLC-UV detection with ultrasonic-assisted extraction and twostep solid phase extraction // Food Chem. 2009. V. 115. № 3. P. 1074. https://doi.org/10.1016/J.FOODCHEM.2008.12.031
- 7. Ahmadi F., Shahbazi Y., Karami N. Determination of tetracyclines in meat using two phases freezing extraction method and HPLC-DAD // Food Anal. Methods. 2015. V. 8. № 7. P. 1883. https://doi.org/10.1007/s12161-014-0073-7
- 8. Shalaby A.R., Salama Nadia A., Abou-Raya S.H., Emam Wafaa H., Mehaya F.M. Validation of HPLC method for determination of tetracycline residues in chicken meat and liver // Food Chem. 2011. V. 124. № 4. P. 1660. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2010.07.048
- 9. Bompadre S., Ferrante L., Alо F.P., Leone L. On-line solid-phase extraction of ceftazidime in serum and determination by high-performance liquid chromatography // J. Chromatogr. B: Biomed. Sci. Appl. 1995. V. 669. P. 265. https://doi.org/10.1016/0378-4347 (95)00100-w
- 10. Киричук В.Ф., Барагузина В.В. Экспрессное определение β-лактамных антибиотиков в биологических средах с применением потенциометрических сенсоров // Антибиотики и химиотерапия. 2007. № 9-10. С. 14.
- 11. Татаева С.Д., Магомедова В.С., Магомедов К.Э. Определение ионов свинца с помощью электрода на основе диантипирилметана // Журн. аналит. химии. 2016. Т. 71. № 11. С. 1172.
- 12. Кулапина Е. Г., Чанина В. В. Модифицированные потенциометрические сенсоры различных типов для определения цефтриаксона // Изв. Сарат. ун-та. Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология. 2020. Т. 20. № 3. С. 259. https://doi.org/10.18500/1816-9775-2020-20-3-259-267
- 13. Кулапина Е.Г., Кулапина О.И., Утц И.А., Михайлова М.С. Мембрана ионселективного электрода для определения цефалоспориновых антибиотиков в лекарственных и биологических средах. Патент РФ № 2469304 С1. Заявка 2011120384/15 от 20.05.2011, опубл. 10.12.2012. Б. И. № 34.
- 14. Шведене Н.В., Боровская С.В. Ионометрическое определение β-лактамных антибиотиков // Журн. аналит. химии. 2003. Т. 58. № 11. С. 1208.
- 15. Magomedov K.E., Zeynalov R.Z., Suleymanov S.I., Tataeva S.D., Magomedova V.S. Calculation of lipophilicity of organophosphate pesticides using density functional theory // Membranes. 2022. Т. 12. № 6. P. 632. https://doi.org/10.3390/mem-branes12060632
- 16. Алексеев В.Г. Кислотно-основные свойства пеницилинов и цефалоспоринов // Хим.-фарм. журн. 2010. Т. 44. №. 1. С. 16.
- 17. Татаева С.Д., Магомедов К.Э., Зейналов Р.З. Мембрана ионселективного электрода для определения цефтриаксона в биосистемах. Патент РФ № 2789107. Заявка 2022103812 от 14.02.2022, опубл. 30.01.2023.
